丁老师：我们每天染色前的第一件是就是过滤氧化膜，染出来的效果不错。一般持续染一段时间，直到氧化膜几乎都不出了，这时染色已较浅，才弃之。我想说的是一出现氧化膜，就更换是否太浪费了？您说的过滤后不久又出现，是指多长时间呢？

（1）冰箱冷藏室过夜是错误的，苏木素配好后快速冷却，目的是为了防止在高温下氧化剂作用过快而过度氧化。然而，至室温后，还需要长时间苏木素的氧化成熟过程，这也就是为什么冬天气温低、苏木素不容易成熟的原因。而你的低温阻止了苏木素的成熟。

（2）改良Lillie-Mayer’s苏木素在原有的配方上加了甘油，目的是为了延缓氧化的过程，对粘液组织（如肠粘膜）、胞浆容易出现共染现象，这只适合于苏木素的染片数量赶不过氧化速度：即标本量少（也就是说一个月少于2000张切片）的单位。一般来说，所谓的改良，大多数都没有原有的好。改良Lillie-Mayer’s苏木素不是不会出氧化膜，而是出的速度比较慢，往往还没出现，你已经换了。

（3）出现氧化膜，说明你的苏木素已经过氧化了，如果过滤后不久又出现了，那就应该更换新的苏木素了。苏木素的最佳染色是有量的标准，一般500ml也就能染1800-2000张切片。不是能染上就是好的苏木素，要色彩鲜艳，对比鲜明。

（4）如果加入氧化汞无反应，那肯定是氧化汞质量有问题了。

（5） Gill苏木素液染色效果肯定没有Harris好，主要是氧化速度较慢，特别是室温低于20度时更明显。为了增加其氧化过程，你可以把配好的苏木素放在36度温箱3-5天后再拿出使用。由于现在买氧化汞很麻烦，要公安局批，所以我们现在都用Gill苏木素。

 苏木素染液有氧化膜一层，很烦人，有没有什么办法去掉，谢谢给个建议

 我认为主要是因为配制好的溶液要迅速冷却，当用流水冲至室温后，放入冷藏室以更好地中止氧化反应。不知这样对吗？

我科一直是这样地操作，冷藏过夜地苏木素过滤后会有泥沙样沉淀，但原来过滤地沉淀较少，最近出现加入氧化汞无反应后才发现过滤出地沉渣很多。我们以为是因为氧化汞氧化不全的缘故，不知与“冷藏”有关吗？

 我看技术规范的用量是这样的:

苏木精1克；
无水乙醇10毫升；
硫酸铝钾20克；
蒸馏水200毫升；
氧化汞0.5克；
冰醋酸8毫升。
     先用无水乙醇溶解苏木精，用蒸馏水加热溶解硫酸铝钾，然后将该两液混合并煮沸，加入氧化汞，继续加热和搅拌溶液至深紫色，随即用冰水冷却，恢复至室温后过滤备用。使用前加入冰醋酸并混匀、过滤。

 谢谢周祀侨、197、ZXH887119老师的回复。

我们科室根据自己的实际情况换算后的苏木素配制成分为：苏木素：3.5g、硫酸铝钾：52.5g、无水乙醇：35ml、蒸馏水：700ml、氧化汞：1.75g、冰醋酸：35ml。

配制方法为：先用蒸馏水加热溶解硫酸铝钾，用无水乙醇溶解苏木素，然后倒入已溶解的硫酸铝钾水溶液中，煮沸1分钟。离火加入氧化汞，然后继续加热煮沸0.5-1分钟，(我们也试过不离火直接加氧化汞，效果同样不好)随即用自来水冲使染液迅速冷却，之后用纱布盖住瓶口，放于冰箱冷藏室过夜。次日过滤两次后加冰醋酸使用。

请各位看看我们的配制方法是否存在什么漏洞？

改良Lillie-Mayer’s苏木素与传统Haris苏木素在染色效果上稍有不同，在我觉得是：改良Lillie-Mayer’s苏木素染色比较亮丽，但是似乎更容易使胞浆被苏木素着染；宫颈上皮粘液染色偏紫红；在宫颈涂片中，粘液处不容易污上苏木素颗粒；不出现氧化膜。

 谢谢197老师的回复，过几天我们也试试使用改良Lillie-Mayer’s苏木素，不知你们觉得改良Lillie-Mayer’s苏木素与传统Haris苏木素在染色效果上有没有区别，哪个更好一点。

同意197的观点，我们都需要行家们的指导，不知各位老师能够解决我上面提出的问题。

 不用加热；碘酸钠应该能称准吧，实在不行，用高级分析天平

敞开放置没试过，您不妨试试；

我们是两月更换差不多；染色时间先短后长，据说与不同的批号产家的染料都有关，少时不到一分钟，多时五六分钟大概；用久了，背景细胞浆似比较灰。个人觉得也许可以做几个尝试:，比如，或许配制时减少醋酸量能不使染色速度太快。据说有的苏木素配方是新配的与用旧的混合起来使用非常好，不知道这种配方是不是也适用这样的新对旧的办法，不妨试试。

用在细胞学染色?要是为妇科细胞学，我觉得还是巴氏好。我们刚刚把HE改成巴氏，虽然染得不是很到位，但还觉得比HE清丽。

哎呀，其实染色我不在行，还是请行家们给些指点吧。我和楼主都很感谢!