以前我们也有类似情况，我认为是脱水过度或透明时间过长所致，适当缩短脱水时间，如果用二甲苯透明总时间最好在1小时30分以内，否则会造成组织过脆，脱水的时候胃镜、肠镜组织尽可能放在最上层，有条件的也可以使用另外的脱水机对小组织标本脱水，脱水时间、浸蜡时间适当缩短些。试试看，如果能解决再感谢我。

脱水不够，延长各道脱水时间，特别是低浓度酒精时间。

还有就是切片的时候，别切得太快、用力太猛了，用力均匀、轻柔一些。

与漂片时的水温有没有关系，是不是温度过高了。

感谢各位同行支持......

放入冰水中彻底水化，水化很重要，试试，效果可以的。

我也遇到过这个问题，把脱水时间和透明时间都缩短点，还有就是蜡块冻的时间也要缩短。

 首先谢谢下  我们任然在尝试中  脱水时间已经缩短到6个小时了  两缸无水总时间1.5h，两缸二甲苯总时间1h，脱蜡3h。  大标本处理的还好，只是小标本裂痕依旧

....

除此之外，还要检查一下烤片机的温度是不是太高了，小标本是经不住烤的。有时会不小心动着温控装置。

小标本临床固定最好不用酒精，脱水机可以适当延长固定时间，缩短酒精和二甲苯时间，另外可以尝试小标本用双层滤纸包裹。

查查小标本的固定液有无问题，你们是临床自己配还是配好后给临床。

我也出现这样的问题了，求解？？

试试从低浓度酒精开始脱水，我们从75的开始脱，也很好。75的一缸，85的二缸，95的二缸，100的二缸，环保透明剂二缸。除了75的是二小时，其它的都是每缸一小时，浸蜡65度一共四小时，分两缸。补充固定用的是10%中性缓冲福尔马林，一缸3小时。你试一试吧，我们用了蜡块很好切，小标本切得都很完整，没有裂痕。

还有，你们问一问临床，他们送的活检标本用的什么固定液，是不是用的酒精，酒精固定的都不好切，另外看一看配的浓度是多少？建议都用10%中性缓冲福尔马林固定。