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求助:一抗为IgM,整张片子都是很强的背景着色!怎样解决?

lzyr 离线

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楼主 发表于 2010-10-02 22:06|举报|关注(0)
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    做免疫组化过程中遇到了难题,尝试了许多方法都无法解决,恳请大家的帮助。
    我要检测的抗原是OA软骨中的X型胶原,一抗是abcam公司的产品,货号:ab49945,小鼠抗人单克隆抗体,类型为IgM,二抗购自JacksonImmunoResearch公司,兔抗鼠IgM(Peroxidase-conjugated Affinipure Rabbit Anti-Mouse IgM,μChain Specific (mimimal cross-reaction to Human Serum Proteins))。步骤:免疫组化常规烤片,脱蜡,入水后,3%的过氧化氢室温阻断10min,胃蛋白酶37℃消化半个小时,然后用兔血清封闭30min,倾去血清后,加一抗,4℃过夜;加二抗,室温孵育一个小时,最后DAB显色,结果整张切片都是很深的背景着色,将一抗稀释到1:2000,二抗稀释到1:400,仍然是整张切片都是较深的背景着色。
    一起做的还有II型胶原,一抗的类型是IgG,也是购自abcam公司,二抗也是Jackson公司的,步骤也相同,就染的很好,没有出现上面的问题。
    请问,是不是因为一抗是IgM的原因,所以出现这么强的背景着色,那么有没有什么解决方法呢?跪求各位高手指点!
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yang 离线

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1 楼    发表于2010-10-02 23:00:00举报|引用
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1.二抗无需用兔抗鼠IgM的抗体,用一般的羊抗鼠IgG即可。

2.如果使用兔抗鼠IgM的二抗,不要用兔血清来封闭。

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lzyr 离线

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2 楼    发表于2010-10-03 11:09:00举报|引用
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 多谢版主的指点,但我在网上看到的观点却是,如果一抗是IgM,那么二抗也必须要是IgM。还有,如果用版主推荐的第二种方法的话,是不是就不需要封闭这一步了?再次恳请版主赐教!
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yang 离线

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3 楼    发表于2010-10-04 12:20:00举报|引用
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lzyr:很是抱歉,我在上次回答中,有一个建议考虑不周现收回(2.如果使用兔抗鼠IgM的二抗,不要用兔血清来封闭。)这个对你实验结果背景染色减少应该没有帮助,也就是说你可以使用兔血清封闭。

 问题二:但我在网上看到的观点却是,如果一抗是IgM,那么二抗也必须要是IgM.这是个误区,二抗是特异的同特定种属的一抗结合,二抗同一抗的结合是二抗的可变区同一抗的y结构结合(IgG是单体y结构,而IgM为五倍体的y结构),也就是说二抗只管是否有某一种属来源的免疫球蛋白y结构而不用管对方是单倍体还是五倍体,所以二抗不是必须使用IgM类型(但可以使用)。现在病理科中用的CD15(霍奇金淋巴瘤的一种标记物)就是IgM型抗体,用平常的抗鼠IgG二抗链接的很好呀!因为平常大家绝大多数都是使用抗鼠IgG的二抗(>99.99%),反而对IgM类型的二抗掌握甚少。

你其他鼠抗实验结果良好说明该实验使用的jackson公司的二抗质量良好,你可以用这个二抗来进行IgM抗体的实验。

还有你是否做过同型阴性对照?这样将对你的实验优化很有帮助。

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lzyr 离线

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4 楼    发表于2010-10-04 21:14:00举报|引用
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     再次感谢版主详细的讲解。版主推荐的两种方法我都试过了,一是用羊抗鼠IgG来做,另外不加兔血清的我也做了,可结果仍然是整张片子都是背景着色。
    (本想拍两张片子给版主看下,但现在正好放假,拍照的显微镜无法使用,所以只能等两天了。)
    还有,版主提到的同型阴性对照是指使用与一抗相同种属来源、相同亚型、相同剂量以及相同的免疫Ig及亚型的免疫球蛋白来代替一抗吗,即对于我的实验来讲,就是小鼠的IgM?
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yang 离线

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5 楼    发表于2010-10-04 21:58:00举报|引用
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 版主推荐的两种方法我都试过了,一是用羊抗鼠IgG来做,另外不加兔血清的我也做了,可结果仍然是整张片子都是背景着色。这样看来估计还是一抗浓度过高所致。


版主提到的同型阴性对照是指使用与一抗相同种属来源、相同亚型、相同剂量以及相同的免疫Ig及亚型的免疫球蛋白来代替一抗吗,即对于我的实验来讲,就是小鼠的IgM?严格意义上的同型阴性对照应该是这样的,还有楼主用的是那种方式链接的二抗(检测放大系统)?

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海上明月 离线

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6 楼    发表于2010-10-05 13:14:00举报|引用
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 减少胃蛋白酶处理时间;

每一步骤后腰充分洗涤5min X3;

新鲜配置DAB显色,控制好显色时间。

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王军臣

lzyr 离线

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7 楼    发表于2010-10-05 14:49:00举报|引用
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    一抗浓度我已经稀释到1:2000了,从1:2000到1:2000的我都试过了,但背景着色仍然存在。只是稍微淡一些。我用的二抗是那种最普通的,就是一个二抗分子链接一个HRP,非检测放大系统。
    另外“海上明月”提供的三条建议,后两条而都是严格遵守的,第一条胃蛋白酶处理时间,我一直都是消化30min,是不是还要再缩短?谢谢!
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lzyr 离线

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8 楼    发表于2010-10-05 15:44:00举报|引用
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 附:我买的胃蛋白酶是Sigma公司的,货号P6887,3200-4500units/mg protein,
配制:
 0.1N的HCl 100ml + 400mg的的胃蛋白酶粉末
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yang 离线

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9 楼    发表于2010-10-06 12:21:00举报|引用
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 一抗浓度我已经稀释到1:2000了,从1:2000到1:2000的我都试过了,但背景着色仍然存在。只是稍微淡一些。
1:2000并不算高,我们在肾脏中的IgM免疫组化的条件,通常是双修复(先胰酶,再高压)。

我用的二抗是那种最普通的,就是一个二抗分子链接一个HRP,非检测放大系统。二抗同HRP是用Biotin+Avidin链接还是polymer链接的?

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lzyr 离线

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10 楼    发表于2010-10-06 19:01:00举报|引用
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    版主的意思是一抗的浓度可以再继续稀释?那一般你们都是稀释多少倍?
    关于修复条件,我是用胃蛋白酶修复,如果用双修复的话对减少非特异性染色有帮助吗?
    二抗同HRP的连接,不是Biotin+Avidin的方式,也不是那种Evision的放大方式,而是通过共价键直接连接的。(不会意思,对于酶标抗体的连接方式,我不是很明白)。
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